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荧光(FLuor)

DAPI染色原理及使用方法

时间:2022/9/14 8:20:24   作者:郑士利   来源:正势利   阅读:1029   评论:0
内容摘要:1、绿色荧光蛋白GFP最初是从水母中分离得到,在蓝光波长的激发光作用下,能发出绿色的荧光。通过载体构建,将GFP基因与目的基因融合,表达出含GFP的融合蛋白,可用于报告目的蛋白的定位及表达情况。2、PI染色PI是溴化乙啶的类似物,一种可对DNA染色的荧光染料,它能够穿过破损的细胞膜而嵌入双链DNA,PI-DNA复合物在...

1、绿色荧光蛋白

GFP最初是从水母中分离得到, 在蓝光波长的激发光作用下, 能发出绿色的荧光。通过载体构建,将GFP基因与目的基因融合, 表达出含GFP的融合蛋白, 可用于报告目的蛋白的定位及表达情况。

2、PI染色

PI是溴化乙啶的类似物, 一种可对DNA染色的荧光染料, 它能够穿过破损的细胞膜而嵌入双链DNA, PI-DNA复合物在535 nm激发光下, 发出615 nm的红色荧光。PI也可以特异的对植物的细胞壁进行染色。

3、DAPI染色

原理 DAPI是一种可以穿过细胞膜, 与DNA紧密结合的荧光染料, 因此, DAPI可用于标示细胞核。DAPI-DNA复合物在358 nm激发光下,发出461 nm的蓝色荧光。


LSCM实验原理

激光扫描共聚焦显微镜成像原理LSCM采用激光束作为光源, 通过共聚焦成像系统, 使得只有聚光镜聚焦到样品中某个焦点上所产生的激发荧光才能成像, 而来自焦点以外的散射光被小孔或狭缝遮挡, 无法在显示器上面显示荧光信号。通过计算机辅助成像系统, 采集和汇聚每一个点上的荧光信号, 形成清晰的二维图像。由于LSCM可以通过程序控制自动调节并改变焦平面,所以可以通过光学切片改变焦平面而获得不同切片的图像, 通过图像叠加, 可以获得样品的三维结

构。

DAPI染色原理及使用方法:

DAPI 简介:

即4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole),分子式为C16 H15 N5 ·2C3 H6 O3 ,分子量457.48。DAPI 为一种荧光染料,可以穿透细胞膜与细胞核中的双链DNA结合而发挥标记的作用,可以产生比DAPI自身强20多倍的荧光,和EB相比,对双链DNA的染色灵敏度要高很多倍。显微镜下可以看到显蓝色荧光的细胞,荧光显微镜荧光显微镜")观察细胞标记的效率高(几乎为100 %) 。DAPI染色常用于细胞凋亡检测,染色后用荧光显微镜观察或流式细胞仪检测。DAPI也常用于普通的细胞核染色以及某些特定情况下的双链DNA染色。细胞经热激处理后用DAPI染色3分钟,在荧光显微镜下可以看到到细胞核的形态变化。

DAPI染色基本原理:

DAPI 是一种能够与DNA强力结合的荧光染料。它结合到双链DNA小沟的AT碱基对处,一个DAPI分子可以占据三个碱基对的位置。结合到双链DNA上DAPI分子的荧光强度提高大约20倍,常用与荧光显微镜观测,根据荧光的强度可以确定DNA的量。另外,因为DAPI可以透过完整的细胞膜,它可以用于活细胞和固定细胞的染色。在荧光显微镜观察下,DAPI染剂是利用紫外光波长的光线激发。单独DAPI的最大吸收波长为340nm,最大发射波长为488nm;当DAPI与双链DNA结合时,最大吸收波长为364nm,最大发射波长为454nm(10 mM Tris pH7.0,100 mM NaCl,10 mM EDTA),其发散光的波长范围含盖了蓝色至青绿色。DAPI也可以和RNA结合,但产生的荧光强度只有与DNA结合的荧光强度的1/5,其发散光的波长范围约在500nm左右。

免疫荧光DAPI染色原理:

利用固定剂(通常是甲醛或多聚甲醛)将细胞固定,使得细胞膜的通透性大大增加,并且利用Triton-X-100使得一部分膜蛋白变性,从而使通透性进一步加强。利用正常羊血清封闭,可以令许多蛋白先与血清内的非特异性抗体结合,而特异性的抗体由于动力学的关系可以通过竞争性的反应与目的蛋白结合,这一过程可以保证抗体识别的特异性。二抗可以特异性识别一抗的Fc区域,利用二抗连接不同的荧光基团,就可以在荧光显微镜下观察到不同的荧光,从而显示目的基因的表达情况。另外,免疫荧光实验由于其较高的敏感性可以显示出基因表达的亚细胞情况(核内,核外,膜上以及一些较大的细胞器上),所以通常被用来作为基因定位的方法。



DAPI荧光染料 介绍:

DAPI (28718-90-3,DAPI Dihydrochloride)是一种荧光 DNA 染料,可与双链 DNA 的小沟结合,优先选择富含腺嘌呤和胸腺嘧啶 (AT) 的 DNA。 DAPI 常用于显微镜和流式细胞术。 DAPI 可用于固定细胞或活细胞,尽管它在活细胞中的跨膜效率较低并且需要使用更高的浓度。


DAPI染液使用方法:

1.用1mL 的 ddH2O 将 DAPI进行溶解,制成为:2.9mM 的 DAPI溶液(1mg DAPI:1mL H2O)。

备注:DAPI 不能直接采用 PBS 等缓冲溶液进行溶解,需要先用水将其溶解。

2.取适量DAPI水溶液加到PBS缓冲液中,制成:10~50μM的DAPI溶液,推荐采用:PBS配制方法:使用8.00g,NaCl;0.20g KCl;2.9gNa2HPO4·12H2O以及0.2gKH2PO4溶解于1L纯水中。

3.将1/10体积培养基的DAPI溶液加入细胞培养基中,也可以采用1/10浓度的DAPI缓冲液替代培养基使用。

4.在37℃恒温条件下培养细胞约10~20分钟之间。

5.用PBS或者合适的缓冲液洗两次细胞。

6.用带有360nm激发波长和460nm发射波长的滤光片的荧光显微镜进行观察细胞。



标签:染色 原理 使用 方法 

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